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    WB操作流程

    一 樣品準(zhǔn)備
    1 細(xì)胞樣品:將需要抽提的蛋白的細(xì)胞從培養(yǎng)箱中取出,吸去培液,適量預(yù)冷的1×PBS洗滌2次,吸去PBS,加入含有蛋白酶和磷酸酶抑制劑的裂解液,4℃充分裂解細(xì)胞,將細(xì)胞刮入1.5ml EP管中,95℃以上加熱10分鐘,12000g離心 10 分鐘,取上清,進(jìn)行蛋白質(zhì)定量后貯存于 -80℃冰箱。
    2 組織樣品:
    新鮮組織:將組織剪成細(xì)小的碎片,按每20mg組織加入150-250μl裂解液的比例加入裂解液(裂解液中加入蛋白酶和磷酸酶抑制劑),勻漿器勻漿直至完全裂解。裂解后的樣品4℃ 12000g 離心15分鐘,取上清,進(jìn)行蛋白質(zhì)定量后貯存于-80℃冰箱。
    冷凍組織:于-80℃冰箱中取出適量的組織在液氮中迅速研磨成粉末,將研磨好的粉末轉(zhuǎn)移到含有蛋白酶和磷酸酶抑制劑的裂解液的離心管中,4℃ 12000g 離心15分鐘,取上清,進(jìn)行蛋白質(zhì)定量后貯存于-80℃冰箱。
    蛋白定量
    1 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制:取一塊酶標(biāo)板,按照下表加入試劑
    孔號(hào) 1 2 3 4 5 6 7 8
    蛋白標(biāo)準(zhǔn)液(μl) 0 2 4 6 8 12 16 20
    去離子水(μl) 20 18 16 14 12 8 4 0
    對(duì)應(yīng)蛋白濃度(μg/μl) 0 0.05 0.1 0.15 0.2 0.3 0.4 0.5
     
    2. 根據(jù)樣品數(shù)量,將BCA試劑A與試劑B按體積比為50:1配制適量BCA工作液,充分混勻;
    3. 各孔加入180μl BCA工作液;
    4. 把酶標(biāo)板放在振蕩器上振蕩30sec,37℃放置30分鐘,然后在562nm下測(cè)定吸光度。以吸光值為橫坐標(biāo),蛋白濃度(μg/μl)為縱坐標(biāo),繪出標(biāo)準(zhǔn)曲線;
    5. 在酶標(biāo)板中加入2μl待測(cè)蛋白和18μl PBS(稀釋10倍),加入180μl BCA工作液,把酶標(biāo)板放在振蕩器上振蕩30sec,37℃放置30分鐘,然后在562nm下測(cè)定吸光度,每個(gè)樣本重復(fù)做兩個(gè)孔。
    6. 根據(jù)所測(cè)樣品的吸光值,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上即可查得相應(yīng)的蛋白濃度(μg/μl),乘以樣品稀釋倍數(shù)(10)即為樣品實(shí)際濃度(單位:μg /μl)。
    三 PAGE膠的制備
    1. 下層分離膠的制備
        根據(jù)目的蛋白的分子量選擇不同的凝膠濃度,高分子量蛋白用低濃度膠,低分子量蛋白用高濃度膠分離。不同濃度的分離膠按下表進(jìn)行配制,待下層膠凝固后進(jìn)行上次濃縮膠的配制。
     
    2. 上層濃縮膠的配制
    根據(jù)需要按下表配制濃縮膠,并插好梳子。
     
    四 上樣及電泳
    1. 上樣
    每孔上樣量為20-40μg蛋白,可以根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求加大上樣量。根據(jù)蛋白定量結(jié)果取所需蛋白加入適量上樣緩沖液,沸水浴10min后離心取上清上樣。將配制好的PAGE膠放入電泳槽中,加入適量電泳緩沖液,取下梳子用槍輕輕吹打加樣孔,避免孔內(nèi)有余膠殘留影響上樣。將準(zhǔn)備好的樣品用加樣槍慢慢加到對(duì)應(yīng)的孔內(nèi),注意勿溢出加樣孔。
    2. 電泳
    一般濃縮膠80V 20分鐘,分離膠120V 60分鐘,可以根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)要求調(diào)整電壓和時(shí)間。當(dāng)染料到達(dá)膠底部時(shí)切斷電源,停止電泳,進(jìn)行下一步轉(zhuǎn)膜。
    五 轉(zhuǎn)膜
        轉(zhuǎn)膜分為濕轉(zhuǎn)和半干轉(zhuǎn),一般分子量小于100KD選擇半干轉(zhuǎn)。濕轉(zhuǎn)膜三明治排列為:海綿/慮紙///慮紙/海綿,全部緊密排列,特別是膠/膜之間不能留有氣泡,三明治安放的方向?yàn)樨?fù)極為膠,正極為膜,帶負(fù)電的蛋白由負(fù)極向正極方(膜)遷移。30V轉(zhuǎn)膜30分鐘,可以根據(jù)膠的厚度以及蛋白的大小增加轉(zhuǎn)膜時(shí)間。標(biāo)準(zhǔn)的電轉(zhuǎn)緩沖液為1X Tris-glycine buffer 不含SDS,但加入20%甲醇,如果轉(zhuǎn)膜的蛋白分子量大于80KD,則推薦加入SDS 使之終濃度為0.1%。
        半干式轉(zhuǎn)膜中,三明治的排列為:/慮紙///慮紙,用電轉(zhuǎn)緩沖液浸濕后,直接置于電轉(zhuǎn)儀的正負(fù)極之間。膠于負(fù)極而膜置于正極。半干式的電轉(zhuǎn)緩沖液不同于濕式的電轉(zhuǎn)緩沖液,推薦為:48 mM Tris, 39 mM glycine, 0.04% SDS, 20%甲醇。25V轉(zhuǎn)膜30分鐘即可。轉(zhuǎn)膜前將PVDF膜在甲醇中浸泡1-2 分鐘,再孵育于冰冷的電轉(zhuǎn)緩沖液中5 分鐘,膠也需在冰冷的電轉(zhuǎn)緩沖液中平衡3-5 分鐘,否則轉(zhuǎn)膜時(shí)會(huì)導(dǎo)致條帶變形。
    六 膜上蛋白的檢測(cè)
        為檢測(cè)轉(zhuǎn)膜是否成功,可用麗春紅染色,麗春紅染色工作液:2%的麗春紅貯備液1:10 稀釋,即加9 倍的ddH2O
    染色方法:將膜放入TBST 洗一次,再置于麗春紅染色工作液中,在室溫下?lián)u動(dòng)染色5 分鐘,大量的水洗膜直至水變清無(wú)色蛋白條帶清晰,(膜也可以用TBST 或水重新洗后再進(jìn)行染色)PVDF 膜需用甲醇再活化后用TBST洗后進(jìn)行封閉。
    七 膜的封閉及抗體孵育
    1. 封閉:5%脫脂奶粉(檢測(cè)磷酸化蛋白用BSA)室溫封閉1小時(shí)或4℃過(guò)夜。
    2. 一抗:不同公司生產(chǎn)的一抗?jié)舛炔煌鶕?jù)說(shuō)明書稀釋抗體,抗體加入封閉液中稀釋到所需濃度,和膜室溫孵育2小時(shí)或4 ℃孵育過(guò)夜。
    3. 二抗:孵育一抗的膜用TBST洗滌3次,每次5min。隨后根據(jù)用量,ECL法按10ml抗體稀釋液加入5μlHRP標(biāo)記二抗(1:2000),與膜374℃孵育1h。用TBST洗滌3次,每次5min。
    八 顯色
    ECL化學(xué)發(fā)光檢測(cè):配制ECL發(fā)光液,根據(jù)用量,取ECL發(fā)光液A和B等量混勻,加在膜的正面暗室避光5分鐘。倒掉顯色液,用紙小心吸取顯色液,在上面蓋上一層平整的透明紙。暗室中打開(kāi)紅外燈,取出感光膠片做好標(biāo)記,輕輕放在膜上,顯色30-60s,拿開(kāi)膠片立即完全浸入顯影液中1-2min,在放入定影液中1min,離開(kāi)暗室觀察結(jié)果。可以根據(jù)條帶強(qiáng)弱再次感光或減短感光時(shí)間已達(dá)到理想結(jié)果。
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